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相信如何提高目的重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)量是很多同學(xué)在研究中都會遇到的問題。泡了無數(shù)論壇，看了無數(shù)帖子，嘗試過IPTG的誘導(dǎo)濃度、培養(yǎng)基成分、誘導(dǎo)溫度、誘導(dǎo)時(shí)間，甚至讓別的公司幫忙做密碼子優(yōu)化（將目的片段通過全基因合成的方式合成出來）?？偟膩碚f，提高IPTG濃度是可以提高目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)量的，但一般也就用到1mM的濃度，再高對細(xì)胞有毒性； 培養(yǎng)基營養(yǎng)越豐富，表達(dá)量越高，所以如果追求表達(dá)量的話，就不要用LB培養(yǎng)基了，用自動誘導(dǎo)培養(yǎng)基吧； 誘導(dǎo)溫度，溫度越低表達(dá)量越低，但是可溶的比例一般來說會越高，所以如果追求表達(dá)量可以嘗試37℃或者42℃（沒試過42℃）；誘導(dǎo)時(shí)間，這個(gè)跟培養(yǎng)基成分及供氧情況很有關(guān)系，如果供氧不足/營養(yǎng)不夠，提高時(shí)間會起到反效果。

綜合而言，一般用的重組蛋白誘導(dǎo)表達(dá)條件是固定的，有時(shí)候要追求可溶表達(dá)，頂多就調(diào)整下誘導(dǎo)溫度（25℃）。條件就是：自動誘導(dǎo)培養(yǎng)基（不用額外的IPTG），37℃，20h。一般來說大分部蛋白的表達(dá)量都還可以。

但有些蛋白的表達(dá)量不行，或者某些蛋白需要長期大量使用，因此提高這些重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)量就十分有必要了，如果進(jìn)一步提高呢？

我們都知道，蛋白質(zhì)的表達(dá)量和蛋白質(zhì)的翻譯效率有關(guān)，翻譯效率又跟mRNA的二級結(jié)構(gòu)又有關(guān)系，如果mRNA形成了復(fù)雜的二級結(jié)構(gòu)，會導(dǎo)致核糖體無法順暢的將整個(gè)mRNA讀通，甚至?xí)崆皬膍RNA上掉下來。一般公司號稱的密碼子優(yōu)化，也就是通過替換掉一些稀有密碼子，顯然如果不從二級結(jié)構(gòu)上考慮的話，是沒法提高蛋白質(zhì)的表達(dá)量的，而事實(shí)也確實(shí)如此。在公司做研發(fā)的幾年中，做過多個(gè)蛋白的密碼子優(yōu)化（通過全基因合成的方式），結(jié)果差強(qiáng)人意。

今天介紹的方法，不是從二級結(jié)構(gòu)上來預(yù)測的（據(jù)我所知，目前沒有比較準(zhǔn)確的方法來預(yù)測mRNA的二姐結(jié)構(gòu)），而是一種簡單、高效的方法：通過優(yōu)化目的基因的5'部分DNA序列，而且不需要通過軟件預(yù)測，*隨機(jī)，包含所有可能（理論上），且不改變氨基酸序列。

原理：蛋白質(zhì)的翻譯效率很大程度上跟翻譯起始效率有關(guān)，因此mRNA的5'端必須得很好翻譯，最好不要有復(fù)雜的二級結(jié)構(gòu)；通過PCR的方法在基因的5‘端引入簡并序列，構(gòu)建克隆，挑選多個(gè)克隆，誘導(dǎo)表達(dá)之，SDS-PAGE電泳檢測表達(dá)量的高低，挑選高表達(dá)克隆進(jìn)行測序。

實(shí)驗(yàn)步驟：
1.設(shè)計(jì)目的重組蛋白質(zhì)的N端10-15個(gè)氨基酸的簡并序列。
2.引物合成上述簡并序列，同時(shí)設(shè)計(jì)合成目的基因反向引物。
3.PCR擴(kuò)展目的基因，這樣在目的基因的5‘端就引入了兼并序列，同時(shí)不改變氨基酸序列。
4.雙酶切，插入到目標(biāo)載體。
5.轉(zhuǎn)化。
6.挑選多個(gè)克?。ū热?00-200個(gè)）到1.5ml EP管，直接誘導(dǎo)表達(dá)（記得帶上為改造克隆菌株的對照）。
7.SDS-PAGE檢測。
8.挑選高表達(dá)的多個(gè)克隆，測序。